根據電子照射在標本上的方式以及接收呈像的訊息種類，電子顯微鏡可分為穿透式電子顯微鏡（Transmission Electron Microscope, TEM），掃描式電子顯微鏡（Scanning Electron Microscope, SEM），掃描穿透式電子顥微鏡（Scanning Transmission Electron Microscope, STEM），以及電子微探分析儀（Electron Probe Microscope analyzer, EPMA）等等。然而，不論是那種電子顯微鏡，在觀察物質的顯微結構方面都有很大的貢獻。在獸醫界，我們常常要跟一些肉眼看不到的病原奮鬥，例如細菌、病毒等這一類的病原，這些病原有許多是無法利用一般光學顯微鏡觀察得到，但電子顯微鏡卻可以解決這樣的問題。尤其是穿透式電子顯微鏡的運用，從過去二十幾年以來，這項技術的發展已成為病毒性疾病診斷上常被利用的工具之一，尤其是配合負染色法（negative stain）及超薄切片法（ultrathin section）的技術發展與建立，使我們可以以更快速且正確的方法來觀察我們所對抗的疾病病原，其形態、大小等等特性，對於疾病的診斷或是研究都有許多的貢獻。

　　在進入真正主題（常見DNA病毒形態介紹）前，對所謂負染色法及超薄切片法作一番簡單的解釋及比較。負染色法主要處理的檢體以液態狀為主，如細胞培養液、乳劑等等，處理的流程簡單快速，所觀察的對象主要為完整的細菌或病毒顆粒外部形態，而超薄切片法處理的檢體以固態為主，如檢體組織塊，處理的流程繁雜且較負染色法緩慢，所觀察的對象著重於檢體組織細胞的顯微變化、病原聚集或複製在於細胞的何種位置等，此類病原與細胞之間關係之探討，呈現的影像皆為檢體組織細胞或病原的縱切或橫切切面為主。

　　DNA病毒及RNA病毒依照病毒結構對稱性的不同來區分，可分為三大類，第一類20面體立方對稱性病毒，多為無封套性病毒，如Parvoviridae、 Adenoviridae；第二類為螺旋對稱性病毒，如Paramyxoviridae 、Orthomyxoviridae；第三類稱為複雜性病毒，如Poxviridae，此類病毒因為其結構複雜而無法具體形容之，所以歸類於第三類病毒。

　　以下即為5種常見DNA病毒形態，經本所以負染色法處理穿透式電子顯微鏡觀察所得之結果。

1. Adenoviridae 腺病毒科

   腺病毒科病毒，不具封套（nonenvelope），其蛋白衣（capsid）由250個次蛋白衣（capsomers）構成，次蛋白排列顯著為其特色，蛋白衣包裹著DNA形成核蛋白衣（nucleo capsid），核蛋白衣呈現有角度之20面體對稱結構，病毒直徑約70 nm~90 nm，有12個頂端稱為五角體基（penton base），從頂端伸展出去有一個約2 nm寬10 nm~25 nm長末端具結節狀的突出物或稱為纖維（filament），此纖維具特異性抗原，即血球凝集素，但在負染色法觀察下，此纖維結構常因斷裂而無法被觀察到。

2. Herpesviridae　疱疹病毒科

   疱疹病毒科病毒具封套（envelope），包含封套的病毒顆粒直徑約120 nm~200 nm，呈圓球形，核蛋白衣（nucleocapsid）由162個次蛋白衣構成，呈20面體結構，核蛋白衣直徑100 nm~110 nm，次蛋白衣呈球中空的三角或五角形管子，此為特徵性結構。

3. Parvoviridae 小 DNA病毒科

   小DNA病毒科病毒，不具封套（non-enveloped），蛋白衣由60個次蛋白衣構成，病毒直徑僅約18 nm~22 nm，次蛋白衣本身結構呈門把狀，因為太小受限於顯微鏡解析度而無法真正觀察到所謂門把狀結構。核蛋白衣表面有突出物，所以病毒表面呈現有些粗糙狀。

4. Iridoviridae 彩虹病毒科

   彩虹病毒科病毒，具封套，包含封套的病毒顆粒直徑由130 nm~300 nm以上皆有可能，核蛋白衣由812個~1500個次蛋白衣構成，呈現複合型20面體結構，在穿透式電顯觀察下常呈現六角形結構的病毒顆粒。

5. Poxviridae 痘病毒科

   痘病毒科病毒，具封套，呈卵圓形或呈磚形，直徑約140 nm~260 nm，長約220 nm~450 nm，封套有兩屬，外膜表面含有許多寬約8 nm~15 nm的線圈所形成之管狀蛋白質線，這些蛋白質線其排列在各亞群不相同，因而使病毒顆粒呈現桑椹狀表面或為毛線球狀表面，在封套內部有一核心含基因體以及圖形側體（lateral bodies），但這些結構不易由負色法觀察到。

參考文獻

1. 陳家全，李家維，楊瑞森。生物電子顯微鏡學，國科會精儀中心，科儀叢書；4，1991。

2. 呂榮修。1995。禽病診斷彩色圖譜。中華名國養雞協會。

3. Calnek, B. W. et al., 1991.Disease of prultry 10th ed.Ames, Iowa, U.S.A

4. Doane F W, and Anderson N. Electron microscopy in diagnostic virology. Cambridge university press. 1987.

5. England J J, and Reed D E. Negative contrast electron microscopic techniques for diagnosis of viruses of veterinary importance. Cornell Vet. 70:125-136. 1980.

6. Flewett T H, Davies H, Bryden A S and Robertson M J. Diagnostic electron microscopy of faeces. Π. Acute gastroenteritis associated with reovirus-like particles. J. Clin. Pathol. 27. 608. 1974.

7. Glauert A M, Practical methods in electron microscopy. North-Holl and publishing company. 1997.

8. BROWN C ET AL. pathogenesis of newcastle disease in chickens experimentally infected with viruses of different virulence Vet.pathol.36:125-132 1999

9. GOHM DS ET AL. a survey of newcastle disease in swiss laying-hen flocks using serological testing and simulation modeling. Prev.Vet.Med.38:277-288 1999

10. SHARMA JM. introduction to poultry vaccines and immunity. In veterinary vaccines and diagnostics. advances in veterinary medicine, rdschultz ed. 481-494 1999.

11. KUIKEN T ET AL. excretion of pathogenic newcastle disease virus by double- crested cormorants (phalacrocorax auritus) in absence of mortality or clinical signs of disease. avian pathol.27:541-546 1998.

12. MEULEMANS G ET AL. acute pancreatitis in chickens due to non-virulent newcastle disease virus. Vet.rec.143:300-303 1998.